Сетевое издание
Современные проблемы науки и образования
ISSN 2070-7428
"Перечень" ВАК
ИФ РИНЦ = 1,006

МОЛЕКУЛЯРНЫЙ АНАЛИЗ PMP-ГЕНОВ ШТАММА ХЛАМИДИЙ ПП-87, КОДИРУЮЩИХ ПОЛИМОРФНЫЕ БЕЛКИ НАРУЖНОЙ МЕМБРАНЫ

Каримов М.З. 1 Бакиров И.Х. 1 Вафин Р.Р. 2 Равилов Р.Х. 1 Тюлькин С.В. 3 Тупикин А.Е. 4 Ахметов Т.М. 1
1 ФГБОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана»
2 ФГБНУ «Татарский научно-исследовательский институт сельского хозяйства»
3 ФГБУ «Татарская межрегиональная ветеринарная лаборатория»
4 ФГБУН «Институт химической биологии и фундаментальной медицины» СО РАН
Цель настоящей работы – сравнительный молекулярно-генетический анализ pmp-генов штамма хламидий ПП-87, на основе полученных массивов данных полногеномного секвенирования. Оценена идентичность/гетерогенность штамма Chlamydia sp. ПП-87 к штаммам Chlamydia psittaci GR9, Chlamydia psittaci 6BC и Chlamydia abortus S26/3 в процентном выражении выборок локусов pmp-генов. Проанализированные в данной работе pmp-гены, кодирующие полиморфные белки наружной мембраны штамма Chlamydia sp. ПП-87, имеют наряду с референсным штаммом GR9 по подавляющему большинству представленных генов близкородственное сходство к типовому штамму 6BC, нежели чем к штамму S26/3, за исключением pmp18D-гена последнего, являющегося одним из ключей к раскрытию молекулярных механизмов развития инфекционного процесса с обоснованием патогенеза хламидийной инфекции, ассоциированной с колонизацией плаценты хозяина внутриклеточным паразитом, и прояснению эволюции хламидий.
секвенирование
полиморфные белки наружной мембраны
pmp-гены
хламидии
1. Плахова, К.И. Генетические варианты C. trachomatis и поиск факторов вирулентности / К.И. Плахова, О.С. Кожушная, М.Р. Рахматулина, Н.В. Фриго // Вестник дерматологии и венерологии. – 2012. – № 3. – С. 48-54.
2. Равилов, Р.Х. Штамм хламидий Chlamydia psittaci, используемый для изготовления биопрепаратов для диагностики и профилактики хламидиоза песцов: авторское свидетельство № 1667869 / Р.Х. Равилов, Р.А. Шафикова, А.З. Равилов, А.Ю. Беклешова // опубл. 07.08.1991.
3. Рубаник, Л.В. Механизмы противохламидийного иммунитета и конструирование противохламидийной вакцины / Л.В. Рубаник // Медицинские новости. – 2006. – № 11. – С. 29-35.
4. Knittler, MR. Chlamydia psittaci: new insights into genomic diversity, clinical pathology, host-pathogen interaction and anti-bacterial immunity / M.R. Knittler, A. Berndt, S. Böcker, P. Dutow, F. Hänel, D. Heuer et al. // Int. J. Med. Microbiol. – 2014. – V. 304. – N. 7. – P. 877-893.
5. Thomson, N.R. The Chlamydophila abortus genome sequence reveals an array of variable proteins that contribute to interspecies variation / N.R. Thomson, C. Yeats, K. Bell, M.T. Holden, S.D. Bentley, M. Livingstone et al. // Genome Res. – 2005. – V. 15. – N. 5. – P. 629-640.
6. Vafin, R.R. On the nomenclature and classification of chlamydiae / Vafin, R.Kh. Ravilov, Kh.Z. Gaffarov, A.Z. Ravilov, G.M. Iskhakov, I.Kh. Bakirov, V.N. Kashov // Molecular Genetics, Microbiology and Virology. – 2007. – V. 22. – N. 4. – P. 155-164.
7. Voigt, A. The Chlamydia psittaci genome: a comparative of intracellular pathogens / A. Voigt, G. Schöfl, H.P. Saluz // PLoS ONE. – 2012. – V.7. – N.4. – e35097. Available at: http://dx.plos.org/10.1371/journal.pone.0035097.
8. Wheelhouse, N.M. Processing of Chlamydia abortus polymorphic membrane protein 18D during the chlamydial development cycle / N.M. Wheelhouse, M. Sait, K. Aitchison, M. Livingstone, F. Wright, K. McLean et al. // PLoS ONE. – 2012. – V.7. – N.11. – e49190. Available at: http://dx.plos.org/10.1371/journal.pone.0049190.

Pmp-гены, кодирующие полиморфные белки наружной мембраны хламидий (Polymorphic Outer Membrane Proteins – POMPs), включая функционально схожие белки-аналоги группы автотранспортеров, составляют до 14% всего генетического материала микроорганизма [1, 5].

Полиморфные белки наружной мембраны хламидий, в свою очередь, проявляющие высокую имунногенную активность, применяются при создании субъединичной (пептидной) противохламидийной вакцины [3, 8].

Полиморфизм pmp-генов ассоциирован с патогенетическими свойствами хламидий, их вирулентностью и тканевым тропизмом возбудителя [1, 4]. А методы полногеномного секвенирования способствуют раскрытию молекулярных механизмов его патогенеза [5, 7].

Цель настоящей работы – сравнительный молекулярно-генетический анализ pmp-генов штамма хламидий ПП-87, на основе полученных массивов данных полногеномного секвенирования.

Материалы и методы исследования

Экстракция геномной ДНК штамма хламидий ПП-87, выделенного от абортировавшей самки песца [2, 6], и адаптированного к размножению в желточных оболочках куриных эмбрионов, осуществлена набором «ДНК-сорб Б» («ЦНИИ эпидемиологии», Россия).

Создание фрагментной библиотеки выполнено с помощью набора NEBNext DNA Library (NEB, США), где на начальном этапе проводилась фрагментация геномной ДНК с помощью ультразвука на приборе Covaris S2 (Covaris, США). Далее полученные фрагменты обрабатывались Т4 ДНК-полимеразой для получения «тупых» концов и Т4 полинуклеотидкиназой для присоединения фосфата на 5'-конец. На следующем этапе в реакционную смесь был добавлен фрагмент Кленова для присоединения dА на 3'-конец, что позволило провести дальнейшее селективное присоединение к полученным фрагментам с помощью ДНК-лигазы двуцепочечного адаптера, несущего в своей последовательности участки для проведения полимеразной цепной реакции (ПЦР) и секвенирования. На последнем этапе проводилась ПЦР для увеличения копийности фрагментов, а также для избавления от концевых некомплементарных участков.

Качество полученной фрагментной библиотеки оценивали с помощью набора High Sensitivity DNA Kit на приборе Bioanalyzer 2100 (Agilent, США). Количество ДНК было определено с помощью набора dsDNA High Sensitivity Kit на флюориметре Qubit 1.0 (Invitrogene, США). Секвенирование фрагментной библиотеки на геномном секвенаторе MiSeq (Illumina, США) проводилось по протоколу производителя с использованием набора MiSeq Reagent Kit, 600 Cycles (Illumina, США) в ЦКП «Геномика» СО РАН (Новосибирск).

Результаты исследований и их обсуждение

В результате секвенирования были получены парные чтения длиной 300+300 нт с общим объемом данных порядка 660 тыс. последовательностей, 80% которых имели качество QV>30, эквивалентное 1 ошибке на 1000 нуклеотидов.

Для последующего анализа последовательности были отфильтрованы по качеству (QV>20), оттриммированы и картированы на референсный геном Chlamydia psittaci GR9 (GenBank A/N: CP003791). При этом, количество ридов, соответствовавших этому геному составило всего 1,6% с его покрытием в среднем 2±1,86. Значительная же доля просеквенированного материала – ДНК Gallus Gallus, послужившая причиной низкого покрытия генома хламидий.

Данное обстоятельство не помешало провести анализ идентичности штамма Chlamydia sp. ПП-87 к штаммам Chlamydia psittaci GR9 (CP003791), Chlamydia psittaci 6BC (CP002549) и Chlamydia abortus S26/3 (CR848038) в процентном выражении выборок локусов pmp-генов, представленный в развернутой табличной форме (табл. 1).

Таблица 1

Анализ идентичности штамма Chlamydia sp. ПП-87 к штаммам C. psittaci GR9, C. psittaci 6BC и C. abortus S26/3 в процентном выражении выборок локусов pmp-генов

Chlamydia sp. ПП-87 vs

Chlamydia psittaci 6BC

GR

6BC

Chlamydia sp. ПП-87 vs

Chlamydia psittaci GR9

GR9

S26/3

Chlamydia sp. ПП-87 vs

Chlamydia abortus S26/3

complement(217354..222747)

/gene="pmp1B"

/locus_tag="CPSIT_0231"

/product="polymorphic outer membrane protein B family"

(219145-219769) 92%

(222386-222832) 100%

97

%

complement(217331..222727)

 

/locus_tag="B598_0234"

/product="autotransporter beta-domain protein

(219034-219659) 100%

(222275-222721) 100%

92

%

complement(217265..222631)

/gene="pmp1B"

/locus_tag="CAB200"

/product="polymorphic outer membrane protein"

(218971-219591) 95%

(222188-222625) 87%

complement(223038..225839)

/gene="pmp2A"

/locus_tag="CPSIT_0232"

/product="polymorphic outer membrane protein A family"

(223082-223375) 99%

(225356-225839) 100%

99

%

complement(222927..225728)

 

/locus_tag="B598_0235"

/product="autotransporter beta-domain protein"

(222971-223264) 100%

(225245-225728) 100%

92

%

complement(222833..225634)

/gene="pmp2A"

/locus_tag="CAB201"

/product="polymorphic outer membrane protein"

(222877-223170) 95%

(225153-225634) 93%

complement(293986..296988)

/gene="pmp3E"

/locus_tag="CPSIT_0297"

/product="polymorphic outer membrane protein E family"

(293986-294231) 95%

(296305-296867) 91%

90

%

complement(293489..296485)

 

/locus_tag="B598_0301"

/product=”autotransporter beta domain protein”

(293489-293734) 99%

(295801-296366) 100%

86

%

complement(293548..296514)

/gene="pmp3E"

/locus_tag="CAB265"

/product="polymorphic outer membrane lipoprotein"

(293548-293793) 86%

(295829-296395) 72%

complement(297010..299895)

/gene="pmp4E"

/locus_tag="CPSIT_0298"

/product="polymorphic outer membrane protein E family"

(297010-297564) 89%

(299258-299895) 100%

96

%

complement(296507..299392)

 

/locus_tag="B598_0302"

/product="autotransporter beta-domain protein"

(296507-297061) 100%

(298755-299392) 100%

82

%

complement(296536..299397)

/gene="pmp4E"

/locus_tag="CAB266"

/product="polymorphic outer membrane protein"

(296536-297090) 88%

(298751-299397) 83%

complement(300162..301226) /gene="pmp5E"

/locus_tag="CPSIT_0300"

/product="polymorphic outer membrane autotransporter beta-domain protein"

(300162-301226) 99%

99

%

complement(299660..300724)

 

/locus_tag="B598_0303"

/product="autotransporter beta-domain protein"

 

(299660-300724) 99%

81

%

complement(299664..300743)

/gene="pmp5E"

/locus_tag="CAB267"

/product="polymorphic outer membrane protein"

 

(299664-300743) 81%

complement(301687..304641) /gene="pmp6H"

/locus_tag="CPSIT_0301"

/product="polymorphic outer membrane protein H family"

(301687-303038) 97%

(304190-304641) 98%

96

%

complement(301185..304139)

 

/locus_tag="B598_0305"

/product="autotransporter beta-domain protein

(301185-302539) 100%

(303688-304139) 99%

88

%

complement(301197..304139)

/gene="pmp6H"

/locus_tag="CAB268"

/product="polymorphic outer membrane protein"

(301197-302548) 88%

(303691-304139) 93%

complement(304667..307798)

/gene="pmp7G"

/locus_tag="CPSIT_0302"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

(304667-305146) 99%

(306510-307228) 93%

96

%

complement(304165..307284)

 

/locus_tag="B598_0306"

/product="outer membrane autotransporter barrel domain protein"

(304165-304644) 100%

(306005-306714) 100%

88

%

complement(304165..307239)

/gene="pmp7G"

/locus_tag="CAB269"

/product="polymorphic outer membrane protein"

 

(304165-304644) 94%

(305993-306669) 87%

complement(308031..310586) /gene="pmp8G"

/locus_tag="CPSIT_0304"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

(308059-308652) 99%

(310248-310586) 99%

99

%

complement(307518..310073)

 

/locus_tag="B598_0307"

/product="autotransporter beta-domain protein"

 

(307546-308139) 99%

(309735-310073) 100%

88

%

complement(307520..310121)

/gene="pmp8G"

/locus_tag="CAB270"

/product="polymorphic outer membrane protein (pseudogene)"

(307548-308141) 90%

(309735-310070) 91%

complement(310842..313676)

/gene="pmp9G"

/locus_tag="CPSIT_0305"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

(310922-311474) 99%

(312659-313254) 94%

96

%

complement(310328..313162)

 

/locus_tag="B598_0308"

/product="autotransporter beta-domain protein"

 

(310408-310960) 100%

(312145-312740) 100%

86

%

complement(310327..313154)

/gene="pmp9G"

/locus_tag="CAB273"

/product="polymorphic outer membrane protein (pseudogene)"

(310407-310959) 89%

(312137-312732) 86%

complement(313808..316330)

/gene="pmp10G"

/locus_tag="CPSIT_0306"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

(313808-314672) 99%

(314724-315874) 99%

99

%

complement(313293..315815)

 

/locus_tag="B598_0309"

/product="autotransporter beta-domain protein"

(313293-314157) 100%

(314209-315359) 100%

92

%

complement(313284..315806)

/gene="pmp10G"

/locus_tag="CAB277"

/product="polymorphic outer membrane protein"

(313284-314148) 93%

(314200-315350) 92%

complement(316486..319020)

/gene="pmp11G"

/locus_tag="CPSIT_0307"

/product="polymerase outer membrane protein G family"

 

(316684-317838) 99%

(318465-319035) 99%

99

%

complement(315971..318520)

 

/locus_tag="B598_0310"

/product="outer membrane autotransporter barrel domain protein"

(316169-317323) 100%

(317950-318520) 99%

91

%

complement(315962..318511)

/gene="pmp11G"

/locus_tag="CAB278"

/product="polymorphic outer membrane protein"

 

(316160-317314) 91%

(317941-318511) 93%

complement(319411..321975)

/gene="pmp12G"

/locus_tag="CPSIT_0309"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

(320158-320380) 95%

(320910-321881) 77%

81

%

complement(319496..321508)

 

/locus_tag="B598_0313"

/product=" chlamydia polymorphic membrane middle domain protein"

(319706-319928) 96%

(320444-321414) 100%\

 

 

 

 

 

(319706-319928) 96%

(320444-321414) 100%

79

%

complement(318850..321371)

/gene="pmp12G"

/locus_tag="CAB279"

/product="polymorphic outer membrane protein (pseudogene)"

(319597-319819) 88%

(320340-321277) 71%

 

 

 

 

 

(319597-319819) 88%

(320340-321277) 71%

complement(324766..327309)

/gene="pmp14G"

/locus_tag="CPSIT_0311"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

(325513-325735) 98%

(326251-327215) 93%

93

%

complement(322106..324637)

/gene="pmp13G"

/locus_tag="CPSIT_0310"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

 

 

 

(322122-322933) 84%

(323411-324637) 77%

79

%

complement(321639..322565)

/locus_tag="B598_0314"

/product="autotransporter beta-domain protein"

complement(322936..324195)

/locus_tag="B598_0315"

/product=" chlamydia polymorphic membrane family protein"

(321655-322466) 98%

(322951-324195) 97%

 

 

 

 

 

(321655-322466) 98%

(322951-324195) 97%

82

%

complement(321502..324045)

/gene="pmp13G"

/locus_tag="CAB281"

/product="polymorphic outer membrane protein

 

 

 

 

(321518-322326) 83%

(322815-324045) 80%

 

 

 

 

 

(321518-322326) 83%

(322815-324045) 80%

complement(327440..330007)

/gene="pmp15G"

/locus_tag="CPSIT_0312"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

(327456-328267) 97%

(328754-330007) 91%

95

%

complement(324766..327309)

/gene="pmp14G"

/locus_tag="CPSIT_0311"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

(325669-326162) 24%

(326221-326878) 50%

46

%

complement(324319..327099)

 

/locus_tag="B598_0317"

/product="outer membrane autotransporter barrel domain protein"

(325207-325700) 100%

(325762-326422) 99%

 

 

 

 

 

(325207-325700) 100%

(325762-326422) 99%

93

%

complement(324168..326948)

/gene="pmp14G"

/locus_tag="CAB282"

/product="polymorphic outer membrane protein"

 

(325056-325549) 93%

(325611-326271) 91%

 

 

 

 

 

(325056-325549) 93%

(325611-326271) 91%

complement(330131..332827)

/gene="pmp16G"

/locus_tag="CPSIT_0313"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

(331019-331512) 99%

(331574-332234) 99%

99

%

complement(327440..330007)

/gene="pmp15G"

/locus_tag="CPSIT_0312"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

(327748-329521) 6%

23

%

complement(327243..331313)

 

/locus_tag="B598_0318"

/product="outer membrane autotransporter barrel domain protein"

(329154-330840) 100%

 

 

 

 

 

(329154-330840) 100%

88

%

complement(327092..331228)

/gene="pmp15G"

/locus_tag="CAB283"

/product="polymorphic outer membrane protein"

 

(329012-330665) 84%

 

 

 

 

 

(329012-330665) 84%

complement(333055..335394)

/gene="pmp17G"

/locus_tag="CPSIT_0314"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

(334963-336639) 89%

complement(335706..337112)

/gene="pmp18G"

/locus_tag="CPSIT_0316"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

93

%

complement(330131..332827)

/gene="pmp16G"

/locus_tag="CPSIT_0313"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

(331233-332229) 1%

0

%

691252..693760

 

/locus_tag="B598_0667"

/product="chlamydia polymorphic membrane family protein"

(691297-692233) 96%

 

 

 

 

 

(691297-692233) 96%

81

%

683361..685902

/gene="pmp16G"

/locus_tag="CAB596"

/product="polymorphic outer membrane protein (pseudogene)"

(683406-684366) 81%

 

 

 

 

 

(683406-684366) 81%

707548..710061

/gene="pmp19G"

/locus_tag="CPSIT_0666"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

(707593-708529) 96%

99

%

complement(333055..335394)

/gene="pmp17G"

/locus_tag="CPSIT_0314"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

 

(334613-335042) 0%

1

%

693891..695195

 

/locus_tag="B598_0669"

/product="chlamydia polymorphic membrane family protein"

(694155-694553) 90%

 

 

 

 

 

(694155-694553) 90%

79

%

686033..688552

/gene="pmp17G"

/locus_tag="CAB598"

/product="polymorphic outer membrane protein"

 

(686282-686680) 84%

 

 

 

 

 

(686282-686680) 84%

 

 

 

 

 

(687836-688439) 90%

710192..712741

/gene="pmp20G"

/locus_tag="CPSIT_0667"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

(710456-710854) 90%

100

%

712872..715415

/gene="pmp21G"

/locus_tag="CPSIT_0668"

/product="polymorphic outer membrane protein G family"

(714699-715302) 99%

100

%

695847..696563

 

/locus_tag="B598_0671"

/product="autotransporter beta-domain protein"

(695847-696450) 99%

91

%

complement(926701..931305)

/gene="pmp22D"

/locus_tag="CPSIT_0856"

/product="polymorphic outer membrane protein D family"

 

(926975-927345) 91%

(930464-931055) 89%

90

%

complement(902244..906845)

 

/locus_tag="B598_0860"

/product="outer membrane autotransporter barrel domain protein"

(902518-902888) 100%

(906001-906592) 100%

98

%

complement(899562..904163)

/gene="pmp18D"

/locus_tag="CAB776"

/product="polymorphic outer membrane protein"

 

(899836-900206) 96%

(903319-903910) 97%

Данные, представленные в таблице 1, послужили основой для построения обобщенной таблицы анализа гетерогенности штамма ПП-87 к штаммам GR9, 6BC и S26/3 (табл. 2).

Таблица 2

Анализ гетерогенности штамма Chlamydia sp. ПП-87 к штаммам C. psittaci GR9, 6BC и C. abortus S26/3 в процентном выражении выборок локусов pmp-генов

Штамм

Гетерогенность выборок локусов генов pmp1B-pmp9G

S26/3

5-13%

pmp1B

5-8%

pmp2A

14-28%

pmp3E

12-17%

pmp4E

19%

pmp5E

3-12%

pmp6H

6-13%

pmp7G

9-10%

pmp8G

11-14%

pmp9G

GR9

0%

0%

0-1%

0%

1%

0-1%

0%

0-1%

0%

6BC

0-8%

pmp1B

0-1%

pmp2A

5-9%

pmp3E

0-11%

pmp4E

1%

pmp5E

2-3%

pmp6H

1-7%

pmp7G

1%

pmp8G

1-6%

pmp9G

Штамм

Гетерогенность выборок локусов генов pmp10G-pmp22D

S26/3

7-8%

pmp10G

7-9%

pmp11G

12-29%

pmp12G

17-20%

pmp13G

7-9%

pmp14G

16%

pmp15G

19%

pmp16G

10-16%

pmp17G

3-4

pmp18D

GR9

0%

0-1%

0-4%

2-3%

0-1%

0%

4%

1-10%

0%

6BC

1%

pmp10G

1%

pmp11G

8-23%

pmp12G

(2-7%)

(pmp14G)

16-23%

pmp13G

(2-3%)

(pmp15G)

50-76%

pmp14G

(1%)

(pmp16G)

94%

pmp15G

(11%)

(pmp17G)

(pmp18G)

99%

pmp16G

(4%)

(pmp19G)

 

100%

pmp17G

[1-10%)

(pmp20G)

[pmp21G]

(9-11%)

(pmp22D)

 

Вышеприведенный анализ гетерогенности/идентичности по выборкам локусов pmp-генов (табл. 2/1) наглядно продемонстрировал близкородственное сходство штамма ПП-87 к референсному штамму Chlamydia psittaci GR9, но с существенными нуклеотидными различиями, достигающими 10% гетерогенности по отношению к соответствующему локусу B598_0669 штамма GR9 (выборка: 694155-694553 nt).

Полученный результат выравнивания соответствующих нуклеотидных последовательностей, отраженный на рисунке 1, проведенный с целью прояснения причины вышеотмеченной существенной гетерогенности, указывает на возможное эволюционное формирование анализируемого локуса pmp-гена штамма ПП-87 под влиянием межштаммовой/межгенной pmp рекомбинации.

Рис. 1. Выравнивание нуклеотидных последовательностей локуса pmp17G/pmp20G-гена штаммов Chlamydia sp. ПП-87 (Query), Chlamydia psittaci GR9 (CP003791), Chlamydia abortus S26/3 (CR848038) и локуса pmp13G-гена Chlamydia psittaci WC (CP003796).

Примечания: Серым цветом выделены последовательности штаммов GR9 и WC, гомологичные соответствующим последовательностям штамма ПП-87.

Дополнительный анализ гетерогенности референсного штамма GR9 к штаммам 6BC и S26/3 в процентном выражении pmp-генов показал меньшую гетерогенность (или большую идентичность) GR9 к 6BC по подавляющему большинству анализируемых генов, за исключением pmp18D-гена штамма S26/3, к которому штамм GR9 по соответствующему локусу B598_0860 проявляет наиболее близкородственное сходство, нежели чем к аналогичному pmp22D-гену 6BC (табл. 3).

Таблица 3

Анализ гетерогенности штамма C. psittaci GR9 к штаммам С. psittaci 6BC и C. abortus S26/3 в процентном выражении pmp-генов

Штамм

Гетерогенность выборок локусов генов pmp1B-pmp9G

S26/3

8%

pmp1B

8%

pmp2A

14%

pmp3E

18%

pmp4E

9%

pmp5E

12%

pmp6H

12%

pmp7G

12%

pmp8G

14%

pmp9G

6BC

3%

pmp1B

1%

pmp2A

10%

pmp3E

4%

pmp4E

1%

pmp5E

4%

pmp6H

4%

pmp7G

1%

pmp8G

4%

pmp9G

Штамм

Гетерогенность выборок локусов генов pmp10G-pmp22D

S26/3

8%

pmp10G

9%

pmp11G

21%

pmp12G

18%

pmp13G

7%

pmp14G

12%

pmp15G

19%

pmp16G

9-21%

pmp17G

2%

pmp18D

6BC

1%

pmp10G

1%

pmp11G

19%

pmp12G

21%

pmp13G

54%

pmp14G

77%

pmp15G

100%

pmp16G

99%

pmp17G

(10%)

(pmp22D)

 

(7%)

(pmp14G)

(5%)

(pmp15G)

(1%)

(pmp16G)

(7%)

(pmp17G)

(pmp18G)

(1%)

(pmp19G)

(0%)

(pmp20G)

[pmp21G]

Следует отметить, что по анализируемым выборкам (902518-902888 nt, 906001-906592 nt) локуса B598_0860 штамм GR9 имеет 100% идентичность с ПП-87, который, в свою очередь, аналогично референсному штамму, тоже проявляет близкородственное сходство к S26/3 (pmp18D-ген, локус CAB776, выборки: 899836-900206 nt, 903319-903910 nt), нежели чем к 6BC (pmp22D-ген, локус CPSIT_0856, выборки 926975-9273 nt, 45930464-931055 nt) (табл. 1).

Заключение

Таким образом, установлено, что проанализированные в данной работе pmp-гены, кодирующие полиморфные белки наружной мембраны штамма Chlamydia sp. ПП-87, имеют наряду с референсным штаммом Chlamydia psittaci GR9 по подавляющему большинству представленных генов близкородственное сходство к типовому штамму Chlamydia psittaci 6BC, нежели чем к штамму Chlamydia abortus S26/3, за исключением pmp18D-гена последнего, являющегося одним из ключей к раскрытию молекулярных механизмов развития инфекционного процесса с обоснованием патогенеза хламидийной инфекции, ассоциированной с колонизацией плаценты хозяина внутриклеточным паразитом, и прояснению эволюции хламидий.

Рецензенты:

Госманов Р.Г., д.вет.н., профессор кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии Казанской государственной академии ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана, г. Казань.

Якупов Т.Р., д.вет.н., доцент кафедры биологической и неорганической химии Казанской государственной академии ветеринарной медицины имени Н. Э. Баумана, г. Казань.


Библиографическая ссылка

Каримов М.З., Бакиров И.Х., Вафин Р.Р., Равилов Р.Х., Тюлькин С.В., Тупикин А.Е., Ахметов Т.М. МОЛЕКУЛЯРНЫЙ АНАЛИЗ PMP-ГЕНОВ ШТАММА ХЛАМИДИЙ ПП-87, КОДИРУЮЩИХ ПОЛИМОРФНЫЕ БЕЛКИ НАРУЖНОЙ МЕМБРАНЫ // Современные проблемы науки и образования. – 2015. – № 6. ;
URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=23246 (дата обращения: 28.03.2024).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»
(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

«Фундаментальные исследования» список ВАК ИФ РИНЦ = 1,674