Сетевое издание

Современные проблемы науки и образования

ISSN 2070-7428

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,006

В последнее время исследователи стали чаще интересоваться флавоноидами. Главной причиной этого интереса являются их антиоксидантные свойства в лечении заболеваний, обусловленных окислительным стрессом[4,7]. На основе флавоноидов возможно создание новых высокоактивных лекарственных средств, обладающих противовоспалительной, антиканцерогенной, противовирусной, гепатопротекторной активностью. Исследования последних лет показали, что производные флавоноидов могут успешно использоваться для лечения различных заболеваний, эти вещества зачастую оказываются более эффективными, чем известные лекарственные препараты [3,5].

Байкалин – биологически активный флавоноид, выделенный из корней шлемника байкальского, лекарственного растения, которое используется с древних времен для лечения воспаления, лихорадки и аллергических заболеваний [6]. Ранее нами была продемонстрирована высокая эффективность экстракта из корней шлемника байкальского в качестве гепато- и нефропротектора [1,2]. Поэтому изучение фармакокинетики байкалина необходимо для оценки его биологической активности в органах-мишенях, что может способствовать более детальному изучению механизмов действия байкалина. 

Целью настоящего исследования является изучение фармакокинетики и распределения байкалина в печени и почках.

Материалы и методы

В работе использовали сухой экстракт корней шлемника байкальского (СЭ ШБ) производства ShenzhenNaturactive (КНР) с содержанием байкалина 95% и водорастворимую форму сухого экстракта (СЭ-2-ГП-β-ЦД), которую получали с использованием 2-гидроксипропил-β-циклодекстрина.

Эксперименты проведены на 108 крысах-самцах линии Wistar с массой 220–240 г. СЭ-2-ГП-β-ЦД вводили внутрибрюшинно в дозе 15 мг/кг. СЭ ШБ вводили перорально в дозе 300 мг/кг. Контрольной группе животных вводили воду очищенную в таком же объеме. Распределение байкалина у крыс изучали в печени и почках.

            Забор проб крови и органов при внутрибрюшинном введении проводился через 10, 20, 30 минут и через 1, 2, 4, 6, 8 и 10 часов после введения СЭ-2-ГП-β-ЦД, а  при пероральном введении – через 15, 30 минут и через 1, 2, 4, 6, 8 и 10 часов после введения СЭ ШБ.

Образцы крови центрифугировали, сыворотку крови замораживали и хранили при -18°С до проведения количественного анализа. Для изолирования байкалина из сыворотки крови использовали следующую методику: к 100 мкл сыворотки крови добавляли 1 мл раствора аммония сульфата насыщенного и 3 мл ацетонитрила. Содержимое центрифугировали со скоростью 3000 об/мин в течение 5 минут. Надосадочную жидкость помещали в выпарительную чашку и удаляли растворитель при комнатной температуре. Сухой остаток, полученный после испарения экстрагента, растворяли в 5 мл 96% этанола.

Внутренние органы замораживали и хранили при -18°С до проведения количественного анализа. Для изолирования байкалина из внутренних органов использовали следующую методику: навеску объекта измельчали до размера кусочков 0,5x0,5x0,5 см и заливали водой, подкисленной щавелевой кислотой до pH 2-2,5, в соотношении 1:2. Настаивали 2 раза: 2 ч и 1 ч при периодическом перемешивании. Водную вытяжку процеживали через двойной слой марли, подщелачивали до pH 7-8 25% раствором аммиака, добавляли 1 мл раствора аммония сульфата насыщенного и экстрагировали 3 мл хлороформа. Содержимое взбалтывали в течение 5 минут и помещали в делительную воронку. После разделения фаз отделяли слой органического растворителя. Растворитель удаляли при комнатной температуре. Сухой остаток, полученный после испарения экстрагента, растворяли в 5 мл 96% этанола.

Обнаружение и количественное определение байкалина в извлечениях проводили методом ВЭЖХ на приборе «Миллихром А-02». Нами были использованы следующие условия хроматографирования: хроматографическая колонка размером 2x75 мм, заполненная обращено-фазовым сорбентом «ProntoSil120-5-С18 AQ»; подвижная фаза: элюент А – 0,1% раствор кислоты трифторуксусной, элюент Б – ацетонитрил (от 5% до 95% за 25 мин); скорость потока – 100 мкл/мин; время измерения 0,18 с; температура термостата колонки – 35°С, объем пробы 2 мкл, длина волны – 254 нм. Расчет количественного содержания байкалина в извлечениях проводили по стандартному образцу байкалина.

Результаты и их обсуждение

  Полученный в результате исследования усредненный фармакокинетический профиль зависимости концентрации байкалина в сыворотке крови от времени при разных способах введения приведен на рисунке 1. Выявлено, что после перорального введения СЭ ШБ в оптимальной терапевтической дозе 300 мг/кг, концентрация байкалина в сыворотке крови через 2 часа составила 5,67±0,155 мкг/мл, через 4 часа она увеличилась до 10,8±0,36, достигла максимума через 6 часов – 11,7±0,45, затем через 8 часов концентрация байкалина начала снижаться, а через 10 часов  он в крови уже не обнаруживался.

Сходный фармакокинетический профиль байкалина наблюдался и после внутрибрюшинного введения СЭ-2-ГП-β-ЦД в оптимальной терапевтической дозе 15 мг/кг, за исключением дополнительного максимума, который наблюдался через 10 мин и составил 36,05±2,997 мкг/мл, затем концентрация быстро снизилась, и через 30 минут содержание байкалина в сыворотке крови было ниже порога определения. Через 1 час концентрация байкалина в крови вновь начала повышаться и достигла второго максимума (7,29± 0,177 мкг/мл) через 6 часов после введения. В это же время наблюдалось достижение максимума и при пероральном введении СЭ ШБ, но при этом концентрация байкалина была достоверно выше на 60%. Через 8 часов концентрация байкалина  снизилась до 6,20±0,159 мкг/мл, но была достоверно выше, чем после перорального введения СЭ ШБ в 4,4 раза. Через 10 часов, как и при пероральном введении, байкалин в сыворотке крови не определялся.

 

Рис.1.   Концентрация байкалина в сыворотке крови крыс при пероральном введении СЭ ШБ  и при внутрибрюшинном введении СЭ-2-ГП-β-ЦД

 

Таким образом, изменение концентрации байкалина в сыворотке крови в зависимости от времени при внутрибрюшинном введении СЭ-2-ГП-β-ЦД имело двухфазный характер в отличие от перорального введения СЭ ШБ, причем второй пик повышения концентрации после внутрибрюшинного введения совпадал с максимумом, который достигался через 6 часов после  перорального введения. При этом максимальная концентрация байкалина при пероральном введении СЭ ШБ была достоверно выше на 60%, чем при внутрибрюшинном введении СЭ-2-ГП-β-ЦД, но затем после достижения пика наблюдалось ее более быстрое снижение по сравнению с внутрибрюшинным введением, когда более высокие концентрации поддерживались более длительный период времени (с 7 до 10 часов).

            Изучение распределения байкалина выявило его присутствие в органах-мишенях – печени и почках (рисунок 2). При этом максимальная концентрация байкалина при обоих способах введения была зафиксирована в печени раньше, чем в почках. После перорального введения СЭ ШБ в дозе 300 мг/кг максимальная концентрация в печени достигалась через 6 часов и составила 4,5±0,52 мкг/г, а после внутрибрюшинного введения СЭ-2-ГП-β-ЦД в дозе 15 мг/кг она наблюдалась раньше – через 4 часа и была достоверно выше на 80% (составила 8,1±0,75 мкг/г).

Рис.2.  Концентрация байкалина в печени и почках крыс при пероральном введении СЭ ШБ  и при внутрибрюшинном введении СЭ-2-ГП-β-ЦД

 

Полная элиминация байкалина из печени после перорального введения произошла через 8 часов, а после внутрибрюшинного введения – на 2 часа позже – через 10 часов. Максимальная концентрация байкалина в почках при обоих способах введения достигалась через 8 часов и ее значения достоверно не отличались при внутрибрюшинном введении (2,8±0,25 мкг/г) и при пероральном введении (2,1±0,22 мкг/г). Полная элиминация из почек наблюдалась через 10 часов в обоих случаях.

Полученные нами данные свидетельствуют о присутствии  байкалина в органах-мишенях – печени и почках, как при  пероральном, так и при внутрибрюшинном введениях. При этом максимальная концентрация байкалина, которая достигается в печени после внутрибрюшинного введения СЭ-2-ГП-β-ЦД в дозе 15 мг/кг, почти в 2 раза выше максимальной концентрации в этом органе после перорального введения СЭ ШБ в дозе 300 мг/кг. В почках создаются практически равные концентрации байкалина после внутрибрюшинного и перорального введения исследуемых субстанций, несмотря на существенные различия в оптимальных терапевтических дозах СЭ ШБ и СЭ-2-ГП-β-ЦД.

Заключение

Таким образом, внутрибрюшинное введение СЭ-2-ГП-β-ЦД позволяет уменьшить оптимальную терапевтическую дозу в 20 раз, не уменьшая концентрации действующего начала в органах-мишенях. Кроме того, некоторые регистрируемые эффекты, позволяют заключить о пролонгированности действия СЭ-2-ГП-β-ЦД (более медленная элиминация байкалина из крови и печени). Тот факт, что для достижения терапевтических концентраций байкалина в организме требуется введение peros  значительно более высокой дозы СЭ ШБ, чем при внутрибрюшинном введении СЭ-2-ГП-β-ЦД, говорит о наличии достаточно существенного метаболизма  байкалина в кишечнике при пероральном способе введения.

Рецензенты:

Черников М.В., д.м.н., заведующий кафедрой биологии и физиологии  Пятигорского  медико-фармацевтического института - филиала ГБОУ ВПО ВолгГМУ Минздрава России, г.Пятигорск;

Погорелый В.Е., д.б.н., профессор кафедры фармакологии с курсом клинической фармакологии  Пятигорского  медико-фармацевтического института - филиала ГБОУ ВПО ВолгГМУ Минздрава России, г.Пятигорск.