Современные проблемы науки и образованияrae.ru
Сетевое научное издание

Современные проблемы науки и образования

ISSN 2070-7428«Перечень» ВАКИФ РИНЦ = 0,936

ПОКАЗАТЕЛИ ИММУННОГО СТАТУСА У ПАЦИЕНТОК РАЗНЫХ ВОЗРАСТНЫХ ГРУПП

Маркелова Е.В. 1, Хачатрян Л.С. 1, Бирко О.Н. 2, Байбарина Е.В. 2
1ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
2ООО «Профессорская клиника Юцковских»

Мы живем в стареющем обществе. В современной медицине важное место занимает лечение лиц престарелого возраста. Нарушения работы иммунной системы считаются одной из основных причин старения. В динамике старения возможно нарушение работы как иммунной системы в целом, так и отдельных ее компонентов и механизмов. Их выявление представляется особенно важным при использовании дополнительных экзогенных антигенных воздействий, к которым относится введение ботулотоксина типа А для коррекции гипермимических морщин [1]. Следует учитывать, что это может оказывать влияние и на качество жизни людей зрелого возраста [2].

Взаимосвязь различных патологических процессов с нарушениями иммунологической реактивности позволила сделать вывод, что старение иммунной системы уменьшает продолжительность жизни [3]. При этом ослабление функциональной активности иммунитета с возрастом может быть обусловлено как изменениями самих иммунокомпетентных клеток, так и изменениями клеточного окружения, нейрогормонального равновесия [4].

Согласно результатам проведенного иммунологического обследования [5] было выявлено, что в возрасте от 60 до 74 лет происходит резкое снижение защитных возможностей врожденного иммунитета.

Изменения реактивности неспецифического клеточного и антигенспецифического иммунного ответа у пожилых пациентов носят разнонаправленный характер. Наиболее показательными данными, подтверждающими данный аргумент, являются: снижение СD 3+, CD4+ T-лимфоцитов; как снижение, так и повышение общей гемолитической активности комплемента; уменьшение метаболической активности клеточных факторов неспецифической резистентности, а кроме того, увеличение СРБ [6].

Цель исследования: проанализировать изменение клеточных показателей иммунного статуса в зависимости от возраста пациенток и оценить возможное влияние на них ботулотоксина типа А (БТА), применяемого для коррекции гипермимических морщин.

Материал и методы исследования. При выполнении работы было проведено клинико-лабораторное обследование 200 пациенток разного возраста, обратившихся для коррекции возрастных изменений кожи лица в клиническую базу ФГБОУ ВО ТГМУ Минздрава России ООО «Профессорская клиника Юцковских» с 2011 по 2015 годы. Исследование проведено в два этапа. На I этапе ретроспективно была проведена оценка 300 амбулаторных карт пациенток, получавших коррекцию гипермимических морщин препаратом ботулотоксина типа А. Оценены клиническая эффективность (по времени наступления эффекта и удовлетворенности пациентки), наличие и характер побочных эффектов. На II этапе – наблюдательном, сравнительном, проспективном – было обследовано 200 пациенток трех возрастных групп, которые были разделены на 2 равные группы: в первой группе женщины (n=100 человек) получали лечение гипермимических морщин препаратом ботулотоксина типа А в дозе от 100 до 150 ед. Во второй группе – группе сравнения – эта терапия не проводилась. В качестве материала для иммунологических исследований применялась цельная кровь. Проведены иммунофенотипирование основных иммунокомпетентных клеток с анализом основных эффекторных клеток – Т-лимфоцитов (CD3+CD19-), В-лимфоцитов (CD19+CD3-), NK-клеток (CD3-CD16+CD56+), оценка основных субпопуляций Т-лимфоцитов (CD4+CD3+, CD 19-, CD8+) и маркеров позитивной (CD25+, HLA-DR+) и негативной (CD95+) активации иммунокомпетентных клеток и Т-лимфоцитов (CD3+ CD25+, CD3+HLA-DR+, CD3+CD95+), исследована также минорная популяция лимфоцитов, относящихся к нормальным Т-клеткам-киллерам (CD3+CD16+ CD56+) в трех возрастных группах: молодого, среднего и пожилого возраста, распределенных в зависимости от способа коррекции гипермимических морщин: с применением ботулотоксина типа А или нет. Иммунофенотипирование лимфоцитов проводили методом проточной цитометрии (цитофлуориметр FACScan, Becton Dickinson) с использованием моноклональных антител к кластерам дифференцировки (Claster of Differentiation – CD) с двойной меткой (Bekman Coulter, Франция), рассчитывая удельный вес клеток (%) и их абсолютное содержание в единице объема крови. Математическая обработка показателей проведена методами описательной вариационной статистики с использованием программ «Statistica-10», «R» и «SPSS® v.16.», «MedCalc». Для определения направления и формы связи между признаками, измерения ее степени и оценки статистической значимости использовали методы корреляционного анализа: коэффициент ранговой корреляции Спирмена, критерий χ2.

Результаты исследования и обсуждение. Анализ результатов иммунофенотипирования основных иммунокомпетентных клеток показал, что у женщин пожилого возраста снижен удельный вес лимфоцитов по сравнению с пациентками молодого возраста (р<0,05, табл. 1), однако их абсолютное количество отличалось незначительно (р>0,05). При анализе экспрессии основных дифференцировочных маркеров лимфоцитов и их субпопуляций выявлено, что у женщин пожилого возраста статистически достоверно снижен удельный вес Т-лимфоцитов (CD3+CD19-) за счет уменьшения доли CD3+CD4+Т-клеток хелперов.

Таблица 1

Характеристика основных популяций лимфоцитов у обследованных пациенток основной и контрольной групп в зависимости возраста

Показатели

M±m

Единица измерения

Основная группа (I)

Группа сравнения (II)

30–44 года

n=36

45–59 лет

n=38

60–74 года

n=26

30–44 года

n=30

45–59 лет

n=40

60–74 года

n=30

1

2

3

4

5

6

Лимфоциты

%

36,3±1,8

32,4±1,3

29,6±2,8

р1-3<0,05

36,0±1,6

р3-4<0,05

33,2±1,4

30,1±2,1

р1-6<0,05

р4-6<0,01

кл/109

2,0±0,24

2,1±0,33

1,80±0,3

2,1±0,2

2,15±0,24

1,84±0,16

CD3+ CD19-  

 

%

70,5±1,6

69,4±2,0

р2-6<0,05

60,3±3,2↓

р1-3<0,01

р2-3<0,05

71,4±2,0

р3-4<0,01

68,7±1,7

р5-6<0,05

р3-5<0,05

61,3±2,8

р1-6<0,01

р4-6<0,01

кл/109

1,41±0,16

1,38±0,12

1,18±0,21

1,48±0,17

1,47±0,24

1,18±0,25

CD19- CD3+ CD4+

%

43,4±2,1

42,8±1,7

р2-6<0,05

36,6±2,3↓

р1-3<0,05

р2-3<0,05

42,7±2,0

р3-4<0,05

43,4±2,16

р5-6<0,01

37,0±2,1

р1-6<0,01

р4-6<0,05

кл/109

0,87±0,16

0,90±0,14

0,70±0,15

0,88±0,17

0,93±0,15

0,71±0,16

ИРИ: CD3+ CD4+ /CD3+ CD8+

1,60±0,13

1,57±0,11

1,30±0,15

1,54±0,12

1,61±0,13

1,32±0,12

CD3- CD19+

%

12,6±0,8

12,9±1,4

р2-6<0,05

18,4±2,0↑

р1-3<0,05

р2-3<0,05

13,0±1,2

р3-4<0,05

р4-6<0,01

14,1±1,4

18,6±1,9

кл/109

0,25±0,07

0,27±0,05

0,22±0,04

0,27±0,03

0,30±0,04

0,34±0,05

CD3+ CD16+ CD56+

%

2,5±0,4

3,6±0,3

р2-3<0,01

6,4±0,3↑

р1-3<0,01

2,8±0,3

р3-4<0,001

р4-6<0,01

3,2±0,4

р3-5<0,05

р5-6<0,01

6,0±0,2

р1-6<0,01

р2-6<0,05

кл/109

0,05±0,01

0,07±0,02

0,12±0,02

р1-3<0,05

0,06±0,01

р3-4<0,05

0,07±0,01

0,11±0,02

р1-6<0,05

р4-6<0,05

CD25+

%

8,7±0,7

9,4±0,6

11,3±0,8

р1-3<0,05

р3-4<0,01

7,9±0,5

р4-6<0,01

8,1±0,7

11,0±0,9

р1-6<0,05

 

кл/109

0,17±0,05

0,19±0,04

0,19±0,03

0,17±0,03

0,17±0,04

0,2±0,04

CD3+ CD25+

%

5,2±0,4

4,9±0,6

8,6±0,7

р1-3<0,05

р2-3<0,05

5,1±0,7

р3-4<0,05

5,0±0,6

р3-5<0,05

9,1±0,6

р1-6<0,001

р2-6<0,01

р5-6<0,01

кл/109

0,10±0,03

0,10±0,02

 

0,15±0,01

р2-3<0,05

0,11±0,03

 

0,10±0,02

 

0,16±0,03

р2-6<0,05

р5-6<0,05

CD3+CD95+

%

7,3±0,8

6,5±0,7

10,47±0,4↑

р2-3<0,001

р1-3<0,001

6,3±0,5

р3-4<0,001

7,0±0,8

р3-5<0,05

9,6±0,6

р4-6<0,01

р5-6<0,05

кл/109

0,14±0,04

0,14±0,03

0,18±0,02

0,13±0,02

0,15±0,03

0,17±0,03

HLA-DR+

%

14,6±1,5

р1-6<0,01

15,2±1,0

р2-6<0,001

р2-3<0,001

7,5±0,8↓

р1-3<0,001

13,5±1,6

р3-4<0,05

16,0±1,4

р5-3<0,001

8,1±0,9↓

р5-6<0,01

р4-6<0,05

кл/109

0,29±0,04

р1-6<0,01

0,32±0,07

р2-3<0,05

р2-6<0,05

0,15±0,03

р1-3<0,01

0,28±0,04

р3-4<0,05

0,33±0,05

р5-3<0,01

0,15±0,02

р5-6<0,01

р4-6<0,05

CD3+HLA-DR+

%

4,8±0,5

4,4±0,6

р2-3<0,05

р2-6<0,05

1,6±02↓

р1-3<0,001

3,9±0,4

р3-4<0,05

4,7±0,7

р5-3<0,001

2,0±0,3↓

р5-6<0,01

р4-6<0,05

кл/109

0,096±0,02

0,09±0,02

р2-3<0,05

0,03±0,01

р1-3<0,05

0,085±0,02

р3-4<0,05

0,10±0,02

р5-3<0,01

0,04±0,01

р5-6<0,01

р4-6<0,05

Примечание: статистическая достоверность различий между исследуемыми группами: р 1,2,3,4,5,6.

Молекула CD3+ – это главный маркер зрелых Т-клеток, она состоит из трех полипептидных цепей – γ, δ и ε. Молекула CD3 – это часть Т-клеточного рецептора (ТСR), распознающего антиген. Молекула CD4 является корецептороной структурой ТСR, экспрессируется на Т-хелперах и участвует в распознавании антигена совместно со структурами МНС II. При этом их снижение определено в обеих включенных в исследование группах женщин пожилого возраста (р<0,05–0,01).

Для реализации антигенспецифической цитотоксичности в организме дифференцирована субпопуляция Т-клеток-киллеров или цитотоксических Т-лимфоцитов (CD3+CD8+CD19-). Ключевая роль этих клеток – это защита от видоизмененных и инфицированных собственных клеток. Не установлено существенных различий удельного веса и абсолютного количества CD8+ Т-цитотоксических лимфоцитов в зависимости от возраста (табл. 1). Можно согласиться с авторами, которые считают, что при старении развивается иммунодефицит по Т-системе с преимущественным снижением Т-хелперов [7]. Однако нами не выявлено статистически значимого нарушения иммунорегуляторного индекса у пациенток пожилого возраста, следует только отметить тенденцию к его уменьшению в III возрастной группе (р<0,1). Это в целом отражает удовлетворительную количественную характеристику Т-клеточного иммунного ответа у женщин, в том числе пожилого возраста.

Нами не установлено существенных возрастных изменений CD3-CD19+ В-лимфоцитов у женщин молодого и среднего возраста (табл. 1). Это согласуется с мнением большинства исследователей [1]. Но в группе женщин пожилого возраста определено статистически значимое увеличение удельного веса В-клеток, тогда как их абсолютное содержание не отличалось в других исследованных группах (табл. 1).

При оценке содержания CD3- CD16+ CD56+ (NК-клеток) не было выявлено существенных различий их удельного веса и абсолютного количества в анализируемых группах (табл. 1). В то же время зарегистрировано статистически значимое (р<0,05–0,01) увеличение у женщин пожилого возраста минорной популяции лимфоцитов, одновременно экспрессирующих рецепторы Т-лимфоцитов (CD3+) и CD16+ CD56+-структуры натуральных киллеров и относящихся к клеткам натуральным Т-клеткам-киллерам (табл. 1). Учитывая функциональную роль этих клеток, считаем, что их накопление в крови у людей старше 60 лет имеет адаптивную роль в обеспечении противоопухолевого иммунного ответа в первую очередь.

Анализ экспрессии активационных молекул на иммунокомпетентных клетках и Т-лимфоцитах позволил выявить ряд закономерностей: у женщин пожилого возраста обеих сравниваемых групп выявлено увеличение доли иммунокомпетентных клеток, экспрессирующих CD25 – маркер их ранней активации (табл. 1). При этом возрастало абсолютное число Т-лимфоцитов, несущих рецептор к ИЛ-2 (CD3+ CD25+). Так как этот маркер характерен и для Т-регуляторных клеток, нельзя отрицать вероятность увеличения у пожилых людей числа естественных супрессорных клеток (Т-регуляторных лимфоцитов), в то время как экспрессия маркера поздней позитивной активации была снижена как на всех иммуноцитах, так и на зрелых Т-лимфоцитах у пациенток пожилого возраста. Это свидетельствует о нарушении процессов переключения активации клеток с ранней на позднюю, что может явиться причиной их функционального дефекта.

Оценка доли числа клеток, экспрессирующих CD95 рецептор (маркер готовности к апоптозу), позволила выявить нарушения только в группе женщин пожилого возраста (табл. 1). Они касались доли зрелых Т-лимфоцитов (CD3+CD95+) с маркером поздней негативной активации. Полученные результаты позволяют объяснить механизм выявленного дефицита CD3+CD4+ – Т-хелперов, которые значительно более чувствительны к апоптозу, у этой категории обследованных. Корреляционный анализ позволил выявить сильную прямую связь между содержанием CD4 и CD25 антигенов на CD3+-лимфоцитах (r=0,72; р<0,05) и обратную среднюю связь между содержанием HLA-DR+ на   CD3+-клетках (r=0,5; р<0,05), что подтверждает дефект процессов активации Т-клеточного иммунитета в пожилом возрасте.

Итак, при анализе показателей, характеризующих структуру основных популяций и субпопуляций лимфоцитов периферической крови пациенток в зависимости от возраста, у пациенток старше 60 лет выявлено снижение общего числа Т-лимфоцитов, которое обусловлено дефицитом CD3+CD4+ Т-клеток-хелперов. При этом установлены признаки хронической Т-клеточной активации с нарушением переключения этих процессов с ранней на позднюю и усилии экспрессии маркера готовности к апоптозу (CD3+CD95+) у этой категории пациенток.

Результаты иммунофенотипирования основных лимфоцитов и экспрессии на них активационных маркеров у женщин разных возрастных групп, получавших коррекцию гипермимических морщин, через неделю и через 28 дней после инъекции БТА представлены в таблице 2. Проведенный анализ не позволил выявить статистически значимого влияния инъекций БТА на показатели иммунного статуса. В группе женщин пожилого возраста как до введения БТА, так и в динамике после его введения определено снижение удельного веса лимфоцитов, СД3+СД19-, СД3+СД4+СД19-, увеличение СД3+СД16+СД56+, а также сохранялось нарушение процессов активации иммунокомпетентных клеток (табл. 2).

Таблица 2

Результаты иммунофенотипирования лимфоцитов крови у пациенток, получавших ботулотоксин типа А для коррекции гипермимических морщин, в динамике

Возраст

30–44 года, n=36

45–59 лет, n=38

60–74 года, n=26

Показатели

M±m

7-е сутки

28-е сутки

7-е сутки

28-е сутки

7-е сутки

28-е сутки

1

2

3

4

5

6

Лимфоциты, %

37,0±1,6

р1-5<0,05

р1-6<0,001

34,5±1,2

р2-5<0,05

р2-6<0,05

36,6±1,8

р3-5<0,05

р3-6<0,01

35,8±0,8

р4-5<0,001

р4-6<0,001

30,5±1,4↓

31,2±0,8↓

Лимфоциты (х10/9л)

2,1±0,15

2,0±0,2

2,0±0,15

2,2±0,17

1,9±0,2

1,8±0,17

CD3+ CD19-  

 

%

70,9±1,3

р1-5<0,01

р1-6<0,001

71,8±2,0

р2-5<0,001

р2-6<0,001

72,0±1,7

р3-5<0,001

р3-6<0,01

69,6±1,4

р4-5<0,01

р4-6<0,01

62,1±1,6↓

60,4±2,1↓

кл/109

1,50±0,15

1,45±0,2

1,44±0,15

1,53±0,16

1,20±0,21

1,14±0,12

CD19- CD3+ CD4+

%

43,4±2,1

р1-5<0,05

р1-6<0,05

42,8±1,4

р2-5<0,01

р2-6<0,001

44,0±1,9

р3-5<0,01

р3-6<0,05

43,2±1,6

р4-5<0,05

р4-6<0,05

38,0±0,8↓

37,1±1,6↓

кл/109

0,86±0,12

0,83±0,16

0,84±0,13

0,87±0,18

0,87±0,15

0,74±0,21

ИРИ: CD3+ CD4+ /CD3+ CD8+

1,61±0,13

1,57±0,12

1,60±0,11

1,55±0,09

1,31±0,12

1,30±0,12

CD3- CD19+

%

13,4±1,3

р1-5<0,05

р1-6<0,05

13,1±1,4

р2-5<0,05

р2-6<0,05

13,8±1,5

р3-5<0,05

р3-6<0,05

14,0±1,4

р4-5<0,05

р4-6<0,05

17,8±1,3↑

18,6±1,8↑

кл/109

0,26±0,08

0,25±0,09

0,27±0,12

0,24±0,1

0,30±0,07

0,31±0,1

CD3+ CD16+ CD56+

%

2,8±0,3

р1-5<0,001

р1-6<0,001

2,4±0,2

р2-5<0,001

р2-6<0,001

2,9±0,3

р3-5<0,01

р3-6<0,01

3,2±0,4

р4-5<0,001

р4-6<0,001

5,9±0,1↑

6,4±0,2↑

кл/109

0,06±0,01

р1-5<0,05

р1-6<0,01

0,04±0,01

р2-5<0,001

р2-6<0,001

0,08±0,02

0,1±0,02

0,12±0,02

0,12±0,01

CD25+ лимфоциты

%

7,4±0,7

р1-5<0,01

р1-6<0,01

7,9±0,8

р2-5<0,05

р2-6<0,05

8,1±1,0

р3-5<0,05

р3-6<0,05

8,2±0,9

р4-5<0,05

р4-6<0,05

11,6±0,4↑

12,0±1,0↑

кл/109

0,17±0,03

0,16±0,05

0,19±0,04

0,18±0,05

0,22±0,01

0,2±0,03

CD3+ CD25+

лимфоциты

%

5,1±0,5

р1-5<0,001

р1-6<0,01

5,2±0,6

р2-5<0,01

р2-6<0,01

4,9±0,7

р3-5<0,01

р3-6<0,05

5,3±0,4

р4-5<0,001

р4-6<0,01

8,7±0,2↑

9,0±0,6↑

кл/109

0,11±0,01

р1-5<0,01

0,10±0,02

р2-5<0,01

0,12±0,01

р3-5<0,05

0,11±0,03

р4-5<0,05

0,18±0,02

0,17±0,05

CD3+CD95+ лимфоциты

%

6,5±0,7

р1-5<0,05

р1-6<0,01

6,3±0,6

р2-5<0,05

р2-6<0,01

7,1±0,8

р3-5<0,05

р3-6<0,01

7,2±0,5

р4-5<0,05

р4-6<0,01

9,4±0,8↑

9,7±0,4↑

кл/109

0,14±0,03

0,13±0,04

0,12±0,03

0,14±0,02

0,17±0,03

0,16±0,02

HLA-DR+ лимфоциты

%

14,2±1,2

р1-5<0,01

р1-6<0,01

13,8±1,3

р2-5<0,05

р2-6<0,05

16,1±1,5

р3-5<0,001

р3-6<0,001

15,6±1,0

р4-5<0,001

р4-6<0,01

8,2±0,9↓

8,0±0,8↓

кл/109

0,29±0,04

р1-5<0,05

р1-6<0,05

0,28±0,05

р2-5<0,05

р2-6<0,05

0,3±0,04

р3-5<0,01

р3-6<0,01

0,29±0,04

р4-5<0,05

р4-6<0,05

0,15±0,04

0,14±0,03

CD3+HLA-DR+ лимфоциты

%

4,7±0,4

р1-5<0,001

р1-6<0,001

4,4±0,5

р2-5<0,01

р2-6<0,01

4,5±0,3

р3-5<0,001

р3-6<0,001

4,6±0,4

р4-5<0,001

р4-6<0,001

1,8±0,3↓

2,0±0,2↓

кл/109

0,1±0,02

р1-5<0,05

р1-6<0,05

0,09±0,02

р2-5<0,05

0,09±0,01

р3-5<0,05

р3-6<0,05

0,1±0,02

р4-5<0,05

р4-6<0,05

0,04±0,01↓

0,05±0,01↓

Примечание: статистическая значимость различий между исследуемыми группами р1,2,3,4,5,6 и периодом до введения БТА не установлена.

Таким образом, динамический анализ основных маркеров иммунокомпетентных клеток показал отсутствие влияния применяемых для коррекции гипермимических морщин доз БТА у женщин всех трех возрастных групп.

Выводы. Таким образом, подводя итог данным, полученным при решении вопроса о состоянии основных показателей иммунного статуса у женщин разных возрастных периодов с оценкой возможного влияния БТА, применяемого с целью коррекции гипермимических морщин, можно констатировать, что у женщин пожилого возраста определяются увеличение удельного веса В-лимфоцитов и снижение Т-клеток с дефицитом Т-хелперов, обусловленным усилением готовности Т-лимфоцитов к апоптозу, нарушением процессов позитивной активации лимфоцитов, и компенсаторное увеличение NКТ-лимфоцитов.

Не выявлено количественных нарушений показателей фагоцитоза и функциональной активности В-лимфоцитов по уровню иммуноглобулинов основных классов у этой категории женщин. Применение БТА в дозе от 100 до 150 ед не влияет на исследованные показатели иммунного статуса.


Библиографическая ссылка

Маркелова Е.В., Хачатрян Л.С., Бирко О.Н., Байбарина Е.В. ПОКАЗАТЕЛИ ИММУННОГО СТАТУСА У ПАЦИЕНТОК РАЗНЫХ ВОЗРАСТНЫХ ГРУПП // Современные проблемы науки и образования. 2018. № 6. С. 44-44;
URL: https://www.science-education.ru/article/view?id=28242 (дата обращения: 23.08.2026).