Scientific journal

Modern problems of science and education

ISSN 2070-7428

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,006

Наиболее эффективным как в российской, так и мировой природоохранной практике считается использование нескольких тест-организмов для установления токсичности [5; 16].

При несомненных достоинствах биотестирования исследователи сталкиваются с рядом трудностей в процессе объяснения получаемых результатов. Изложение опыта работы с результатами биотестирования стало целью данной статьи.

Материал и методы исследования

Объектами наших многолетних исследований являются компоненты окружающей среды как относительно благополучных фоновых территорий, так и районов, подверженных техногенному прессу. Кроме того, проводятся эксперименты по моделированию действия приоритетных загрязняющих веществ на тест-организмы различной систематической принадлежности.

Интегральная токсичность водных сред (природных вод, вытяжек из почв, донных отложений) определяется по методикам биотестирования, допущенным для целей государственного экологического контроля и мониторинга и внесенным в федеральный реестр методик РФ [9, 11-13]. Разрабатываются и апробируются авторские методы.

Результаты исследования и их обсуждение

На результаты биотестирования, кроме загрязняющих веществ, присутствующих в пробе, влияет естественная «матрица» водной среды. Матрицей природной воды мы называем здесь весь комплекс веществ, включенных в поверхностные или подземные воды естественным образом и активно формирующих химические, физико-химические и токсикологические свойства вод [6]. Аспекты проблемы:

1) при оценке интегральной токсичности вод нередко «матрица» природной воды, которая принимает загрязнение, маскирует вредные вещества (например, за счет комплексообразования);

2) «матрица» как среда для культивирования тест-организмов, обладая региональными и локальными особенностями, влияет на общее состояние биообъектов, их чувствительность и устойчивость к различным соединениям;

3) кроме того, при реализации многих методик биотестирования культивационная вода используется для приготовления серий разбавлений тестируемой среды, влияя на итоговый результат.

Токсичные вещества могут «маскироваться» за счет органоминеральных взаимодействий, комплексообразования, антагонизма веществ и других явлений, происходящих при приготовлении водных вытяжек из отходов, донных отложений и других тестируемых сред [10; 15]. Показано, что сорбционно-аккумулирующие процессы под влиянием гидробионтов и комплексообразующая способность растворенного органического вещества - определяющие факторы буферной емкости пресных вод [2].

Проблема отчасти решается приемами стандартизации тест-объектов, в том числе поддержанием чувствительности к модельному токсиканту в установленном диапазоне, что предполагается всеми аттестованными методиками.

Выбор подходящей воды для выращивания тест-культуры является одной из первоочередных задач всех лабораторий биотестирования. Для ее решения нередко требуется дополнительная подготовка вод: отстаивание, фильтрация, а также использование воды после содержания в ней высшей водной растительности. Последний прием дает положительные результаты, особенно при выращивании низших ракообразных. Это связано с тем, что нормативно чистые воды, которыми располагают специалисты, чаще всего подземного происхождения, тогда как низшие ракообразные - обитатели поверхностных вод. В этом случае такая предварительная подготовка отчасти приближает физико-химические свойства культивационной среды к требуемым.

Следующая проблема свойственна для методик, в которых в качестве тест-функции выступает гибель организма. Наиболее известными нормативными документами, ориентирующимися на этот показатель, можно назвать методики с использованием низших ракообразных [11, 12]. Дело в том, что до проявления крайней степени токсического эффекта, т.е. гибели, можно наблюдать и использовать для оценки качества тестируемой среды массу показателей. Такие эффекты, как изменение двигательной, пищевой активности, скорости размножения, и другие реакции хорошо идентифицируются, особенно в экспериментах по установлению хронического токсического действия [14]. Однако существующие аттестованные методики этого не предусматривают, вероятно, в силу усложнения процедуры обработки результатов. Например, классический биотест с использованием D. magna в части определения хронических воздействий предполагает подсчет количества абортивных яиц, но при обработке результатов эти данные не используются. В научных работах учет абортивных яиц обсуждается достаточно давно [1].

Для учета количества абортивных яиц предлагаем усовершенствование алгоритма аттестованной методики путем введения дополнительного критерия хронической токсичности: если количество абортивных яиц превысило 10% от числа молоди за период эксперимента, то пробу следует признать оказывающей хроническое токсическое действие.

Критерий апробирован. Например, при исследовании водоемов г. Кирова резкого снижения плодовитости D. magna не наблюдалось, но в ряде проб отмечено появление абортивных яиц, что считается крайне негативным явлением (табл. 1).

Таблица 1

Использование абортивных яиц как критерия хронической токсичности (тест-объект Daphnia magna)

Представленные данные демонстрируют три распространенные ситуации:

1) плодовитость рачков значительно угнетена по сравнению с контролем, но абортивных яиц не обнаружено;

2) плодовитость рачков достоверно не отличается от контрольных показателей, количество абортивных яиц не превышает предложенного критического уровня;

3) плодовитость рачков достоверно не отличается от контрольных показателей, но количество абортивных яиц превышает 10% от общего числа молоди, рожденной в тестируемой среде.

Таким образом, появляется возможность учесть еще одну значимую тест-функцию низших ракообразных.

Продолжая эту серию исследований, в модельных экспериментах при изучении влияния сублетальных доз токсикантов на D. magna и C. affinis оценивали следующие эффекты:

1) день появления (вымета) первой молоди, свидетельствующий о своевременном созревании особей;

2) угнетение трофической функции - оценивали качественно, т.е. визуально. Кормление особей во всех опытных вариантах равнялось контрольному (1 мл суспензии водорослей на 100 мл водной среды). В случае угнетения трофической активности наблюдали зеленый осадок из водорослей, а также зеленый оттенок тестируемой среды;

3) наличие абортивных яиц: в таблице (приводим наличие или отсутствие);

4) к морфологическим изменениям, диагностируемым визуально, относили уменьшение размеров тела по сравнению с контрольными параметрами, а также окраску покровов тела (табл. 2).

Таблица 2

Сравнение токсических эффектов D. magna и C. affinis в ответ на действие токсикантов (концентрация в расчете на Cr, Zn, Sr, B, F равна 0,5 ПДКр.-х.)

Примечание: «-» - эффект не наблюдали; «+» - эффект наблюдали, * - гибель

Угнетение трофической функции, наличие абортивных яиц, бледность покровов, уменьшение размеров тела особей сигнализировали о стрессе организмов.

Различия во времени созревания особей ярче проявились в опытах с D. magna: первый приплод дафний в чистых водах произошел на 10-й день, тогда как при внесении добавок наблюдали торможение созревания яиц (до 13-го дня). C. аffinis развиваются быстрее, поэтому время первого появления потомства фиксируется сложнее.

В результате проведения подобных экспериментов на природных и модельных средах выявлена последовательность появления тест-реакций низших ракообразных: трофическая активность → гибель в остром эксперименте → время появления первой молоди → морфологические изменения → наличие абортивных яиц → плодовитость → гибель в хроническом эксперименте. Оценка такого спектра тест-реакций и учет сублетальных эффектов позволяют выявлять специфическое токсическое действие веществ.

Открытым вопросом реализации и разработки новых методик биотестирования является интерпретация явлений стимуляции тест-функций живых организмов. Под стимуляцией мы понимаем здесь увеличение количественных характеристик состояния организма или их совокупности в процессе эксперимента по установлению токсичности по сравнению с контрольным вариантом. Большинство методик такие эффекты не учитывают. Например, в ФР.1.39.2015.19242 (тест-объект инфузории) согласно пункту 9.4: «отрицательные значения свидетельствуют об отсутствии токсичности и могут быть оценены как нулевые» [13]. Фактически при проведении эксперимента наблюдается стимуляция хемотаксиса инфузорий по сравнению с контролем. Инфузории за 30 мин тест-реакции поднимаются в верхнюю часть кюветы, что характерно для нетоксичных проб, и начинают активно двигаться, завышая измеряемые показатели. Такая реакция может быть начальной стадией токсического эффекта. При увеличении экспозиции после стимуляции двигательной активности особи часто погибают. Однако гибель после стимуляции не является обязательным развитием ситуации. Если причиной стимуляции явилось повышенное содержание питательных веществ, то наступления крайней степени токсического эффекта мы не увидим.

Показано, что влияние многих загрязняющих веществ проявляется до определенного порога в стимуляции как тест-функций, так и продуктивности целых экосистем, и только при повышении дозы начинается угнетение [4; 7]. Для инфузорий наличие стадии стимуляции в динамике токсического эффекта показано авторами при воздействии малого содержания многих загрязняющих веществ (солей металлов, фенолов, пестицидов) [3].

Нами делаются попытки интерпретации явлений стимуляции тест-функций как при работе с естественными средами, так и при проведении модельных экспериментов.

Моделировалось загрязнение почв фторидами, техногенными источниками которых могут являться производства алюминия, заводы, производящие фторполимеры, и объекты уничтожения фторсодержащих отравляющих веществ [8]. Наблюдали стимуляцию хемотаксиса инфузорий и биолюминесценции тест-системы «Эколюм» в ответ на внесение высоких доз фторидов в почвы. При этом степень стимуляции снижалась в ответ на увеличение дозы токсиканта (табл. 3).

Таблица 3

Снижение эффекта стимуляции тест-функций при увеличении дозы фторид-иона

В данном примере проявляется также и эффект «матрицы»: комплекс веществ, насыщающих водную вытяжку из почвы, вероятно, снижает биодоступность и воздействие введенного вещества вплоть до значительных превышений норматива.

При определении токсичности природных вод, как поверхностных, так и подземных, также нередко встречается стимуляция тест-объектов на фоне относительно невысокого загрязнения поллютантами, а также сложного комплексного загрязнения. Приводим несколько примеров (табл. 4).

Таблица 4

Эффект стимуляции хемотаксиса инфузорий в сопоставлении с данными химического анализа при исследовании природной поверхностной воды

Сопоставляя данные биотестирования и химического анализа, можно утверждать, что представленные пробы нельзя назвать безопасными. При всей неоднозначности вывода о токсичности пробы по показателю стимуляции потребность в таком критерии есть.

Заключение

При работе с живыми организмами исследователи сталкиваются с необходимостью многофакторного анализа причин наблюдаемых явлений. Это создает определенные трудности, в частности и при анализе результатов биотестирования. Выход при решении множества проблем данной области стоит искать в унификации группы методов и разработке строгой системы метрологического обеспечения методов биотестирования.

Перспективы развития группы методов биотестирования относятся к поиску еще более чувствительных тест-функций, разработке экспрессных методов установления токсичности, и, безусловно, автоматизации наблюдений за тест-объектами.

Рецензенты:

Ямскова В.П., д.б.н., ведущий научный сотрудник, руководитель группы регуляторных белков лаборатории биохимии процессов онтогенеза ФГБУН Института биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН, г. Москва;

Охапкина В.Ю., д.б.н., доцент, старший научный сотрудник НИЦ (Вч 23527, г. Киров) ФГБУ «48 ЦНИИ» Минобороны России, г. Киров.