Scientific journal

Modern problems of science and education

ISSN 2070-7428

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,006

В последние годы постоянно увеличивается количество рекомбинантных антител, одобренных для терапевтического применения. Растущие потребности в производстве фармацевтических препаратов биологического происхождения стимулируют развитие исследований, направленных на повышение продуктивности клеточных линий млекопитающих, в которых получают свыше 60 % рекомбинантных терапевтических белков. Несмотря на развитие других способов экспрессии, именно биосинтез терапевтических белков в клетках млекопитающих остается приоритетным выбором, так как позволяет получить биологически-активные белки в нативной конформации за счет правильного фолдинга и пост-трансляционной модификации. Одной из наиболее распространенных клеточных линий млекопитающих в фарминдустрии является клеточная линия СНО (клетки яичников китайского хомячка), которая на протяжении многих лет является наиболее изученным и стабильным объектом при производстве рекомбинантных белков. Преимуществом использования СНО клеток  по сравнению с другими клетками, такими как NS0 (клетки миеломы мыши), BHK (клетки почек детенышей хомяка), HEK-293 (эмбриональные клетки почек человека), являются их хорошие характеристики при трансфекции, дальнейшей амплификации и селекции  высокопродуктивных клонов. Кроме того,  СНО клетки обладают способностью давать  высокую плотность при выращивании в суспензии, не образуя кластеров и оседания на дно [7]. Наряду с совершенствованием промышленных способов получения белков, большое значение имеет разработка экспресс-методов повышения уровня продукции рекомбинантных белков при культивировании в лабораторных условиях. Одним из способов увеличения экспрессии требуемого продукта является применение разнообразных добавок к среде культивирования.  

Одним из факторов, дающих позитивный эффект, является  искусственное создание «стрессовых» условий культивирования [3]. Однако такое воздействие проводится только после того, как культура клеток достигла оптимальной концентрации. Особенное значение  при получении высокой продуктивности клеточных линий имеют разработки по применению различных добавок, таких как  натриевая соль вальпроевой кислоты (Na-VPA) или ее аналога - натрия бутирата (NaBu), а также солей цинка.

Соли Na-VPA или NaBu широко применяются для получения высокой экспрессии рекомбинантных белков [3]. Одним из наиболее очевидных факторов, приводящих к таким результатам, является ацетилирование гистонов. Ацетилирование ядерных гистонов оказывает основное влияние на сборку хроматина, но при этом также ингибирует рост клеток и вызывает клеточный апоптоз [4]. 

Цинк предположительно блокирует апоптоз в клетках человека при определенных условиях [5], а также способствует увеличению стабильности мРНК или  с помощью изменения вторичной структуры, или, способствуя присоединению к мРНК стабилизирующих белков [1, 2]. Положительные результаты были достигнуты при применении низких концентраций сульфата цинка. Особенно это было продемонстрировано для продукции рекомбинантного интерферона-гамма. Присутствие таких добавок, как ZnSO₄ и NaBu, в сочетании с понижением температуры выращивания способно увеличить выход продукции от 2 до 8 раз [9].

Также одним из необходимых компонентов среды для выращивания клеток млекопитающих является глутамин. Однако метаболизм глутамина вызывает аккумуляцию аммония в клеточной культуре. Повышение концентрации аммония выше 2 мМ оказывает негативное влияние как на рост клеток, так и на продуктивность рекомбинантных белков. Уменьшение концентрации глутамина в среде для роста CHO клеток улучшает  жизнеспособность клеток, и, как следствие, продукцию  рекомбинантных белков [6]. Удлинение периода жизнеспособности клеток  связано с супрессией роста и арестом клеточного цикла, что и было подтверждено молекулярными исследованиями.

Цель исследования

Исследование влияния натриевой соли вальпроевой кислоты, сульфата цинка, а также глутамина на экспрессию рекомбинантных антител в клетках СНО.    

Материалы и методы

Трансфекцию  суспензионной клеточной линии CHO DG44  проводили с помощью трансфецирующего реагента FreeStyle Max Reagent (Invitrogen). Для трансфекции использовали плазмиды pOptiVEC-L и pcDNA3.3-H, содержащие гены легкой и тяжелой цепей химерного антитела к ФНО-альфа. Клетки после трансфекции   выращивались на селективной  бессывороточной  среде CD OptiCHO. Измерение концентрации клеток и их жизнеспособности проводилось с использованием  0.04 % раствора трипанового синего  в камере Горяева. По достижении плотности клеток 1.7х10⁶ кл/мл и 90 % жизнеспособности, клетки были посеяны в 30 мл полной среды CD OptiCHO в концентрации 1x10⁵ кл/мл в 125 мл флаконы.

Через 48 ч выращивания при 37 °С, 8 % СО₂, 130 об/мин в культуру добавляли стерильный 25 мМ раствор Na-VPA в ДМСО до конечной концентрации 0; 2.0; и 2.5 мМ. Стерильный 2 мМ раствор  сульфата цинка в 1х растворе ФБС  добавлялся в конечных концентрациях 0; 50; 100 мкМ. Среда заменялась каждые 2-3дня.

Пробы для анализа методом ИФА были отобраны на 3-й и 6-й день инкубации. Концентрацию иммуноглобулинов в культуральной среде определяли методом  непрямого сэндвич-ИФА по стандартной методике.

Анализ транзиентной экспрессии адгезионной культуры СНО проводили в среде IMDM в присутствии 0.5 % диализованной сыворотки плодов коровы (DFBS).

Для селекции клонов, стабильно продуцирующих антитела, использовали автоматический флуоресцентный клеточный сортер ClonePix FL, а для оценки конфлюэнтности CloneSelect Imager (оба прибора производства фирмы Genetix, Великобритания). Отбор трансфектантов  с наилучшей экспрессией  антител проводился с помощью клональной селекции на полутвердой среде (Semi-Solid Media, Invitrogen, США) по методике, предложенной производителем.

Результаты и обсуждение

Влияние Na- соли вальпроевой кислоты (Na-VPA) , сульфата цинка и их комбинаций на продукцию антител  в CHO клетках.

Эксперименты по исследованию влияния Na-VPA и сульфата цинка проводили на культуре клеток СНО, транзиентно экспрессирующей рекомбинантные антитела к ФНО-альфа. Для определения влияния Na-VPA клетки после трансфекции   выращивались на селективной  бессывороточной  среде CD OptiCHO в концентрации 1 x10⁵ кл/мл в 125 мл флаконах. Через 48 ч выращивания в культуру была добавлена Na-VPA в конечной концентрации 2.5 мМ. Пробы для анализа методом ИФА были отобраны на 3-й и 6-й день инкубации. На рисунке 1 представлены результаты ИФА образцов среды, полученных в присутствии Na-VPA и в контрольных условиях (среда OptiCHO без добавок).

Рисунок 1. Влияние Na-VPA на уровень транзиентной экспрессии антител клетками СНО

Добавление Na-VPA до конечной концентрации 2.5 мМ более чем на 20 % повышает продуктивность суспензионной клеточной культуры на 6-7 день инкубации по сравнению с контрольными условиями. Более долгое выращивание приводит к снижению продуктивности за счет быстрой гибели клеток.

Влияние сульфата цинка по отдельности, а также в комбинации с Na-VPA проводили  на адгезионных трансфецированных клетках СНО. После проведения трансфекции клетки были посеяны в лунки 24-луночного планшета в среду IMDM + 0.5 % DFBS в количестве 2 х10⁵ клеток на лунку. По достижении клетками конфлюэнтности 90 % среда была заменена на новую, содержащую различные варианты концентраций Na-VPA и сульфата цинка.  Пробы для анализа методом ИФА были отобраны через 48 ч инкубации с добавками.

Результаты ИФА образцов культуральной среды. Таблица 1

Добавление Na-VPA приводило приблизительно к 2-кратному увеличению продукции. Добавление сульфата цинка в концентрациях 25 мМ, 50 мМ и 100 мМ к среде, содержащей 2 мМ Na-VPA, приводило к  1.2-, 3.0- и 2.7-кратному увеличению продуктивности, соответственно. Однако наибольшее увеличение экспрессии антител было получено при выращивании клеток в среде с добавлением только ZnSO₄ в концентрациях: 25 мМ, 50 мМ и 100 мМ. Экспрессия было увеличена в 3.8, 7.5 и 8 раз по отношению к контролю, соответственно.  Наибольший выход продукции был получен при инкубации 48 ч в среде, содержащей добавки.  При увеличении времени инкубации, продуктивность начинала быстро снижаться и наблюдалась массовая гибель клеток. Концентрация сульфата цинка 150 мМ  также приводила к быстрой массовой гибели клеток. Комбинация Na-VPA и сульфата цинка не приводила к увеличению экспрессии - наблюдалась  значительно меньшая  продуктивность.

Таким образом, культивирование в среде, содержащей 100 мМ сульфата цинка, может применяться при получении небольшого количества продукта в малых объемах среды или при транзиентной экспресии.

Влияние низких концентраций L-глутамина на продукцию  рекомбинантных антител  в CHO клетках в условиях стабильной экспрессии.

Обычное содержание L-глутамина в средах, используемых при выращивании СНО клеток, составляет 8 мМ. Такая концентрация глутамина способствует быстрому росту СНО клеток, но не является оптимальной при долгосрочном выращивании для получения продукта из-за накапливания продуктов распада - лактата и аммония. Было исследовано, приводит ли уменьшение концентрации глутамина к увеличению продолжительности жизни культуры и продуктивности. Для данного эксперимента трансфецированные клетки были отобраны с помощью клональной селекции на полутвердой среде (Semi-Solid media "Invitrogen") по предложенной методике с использованием приборов ClonePix и CloneSelect Imager фирмы "Genetix". Далее клетки были посеяны в среду IMDM + 10 % DFBS в концентрации 2 х105 кл/мл в 24-луночный планшет. Для эксперимента в качестве добавок к основной среде использовались  следующие концентрации глютамина: 8.0 мМ, 2 мМ и
0,5 мМ. Пробы для ИФА были отобраны на 12-й день инкубации. Концентрацию  рекомбинантных иммуноглобулинов в культуральной среде определяли методом сэндвич-ИФА по стандартной методике (рисунок 2).

Концентрация 2.0 мМ L-глутамина в среде увеличивала продуктивность в 2.5 раза, а 0.5 мМ L-глутамина - в 1.2 раза по сравнению с контролем, содержащим стандартную среду с 8 мМ L-глутамином. Кроме того, клетки СНО, растущие в среде с пониженным содержанием глутамина, демонстрировали большую жизнеспособность, сопровождающуюся увеличением  продолжительности жизни культуры: так, на 12 день инкубации наблюдался очень высокий уровень жизнеспособных клеток, в то время как в контроле с содержанием
8 мМ глутамина 75 % клеток погибли на 10-й день инкубации.

Рисунок 2. Влияние концентрации глутамина на продукцию антител клетками СНО

Культивирование в присутствии пониженных концентраций L-глутамина позволяет выращивать суспензионную культуру до большей плотности в течение продолжительного времени, что особенно важно при выращивании культуры в больших объемах в спиннерах или биореакторах.

Заключение.

В результате изучения влияния добавок натриевой соли вальпроевой кислоты, сульфата цинка, а также пониженных концентраций глутамина на уровень продукции рекомбинантных антител в клетках СНО при транзиентной и стабильной экспрессии показано, что наибольший эффект наблюдается при добавлении 100 мМ сульфата цинка к ростовой среде, а также при понижении концентрации  L-глутамина до 0.2 мМ. 

Данная работа выполнена в рамках Федеральной целевой программы «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития научно-технологического комплекса России на 2007-2012 годы» (ГК № 16.512.11.2170) при финансовой поддержке Министерства образования и науки Российской Федерации.

Работа выполнена с использованием оборудования, приобретенного за счет средств Программы развития Московского университета.

Рецензенты:

• Румш Л. Д., д.х.н., профессор, заведующий лабораторией протеолитических ферментов Института биоорганической химии им. М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова РАН, г. Москва.
• Свешников П. Г., д.б.н., профессор, генеральный директор Всероссийского центра молекулярной диагностики и лечения, г. Москва.